Metode persiapan slide mikroskop
1. Metode olesan
Metode pengolesan adalah metode menyiapkan slide dengan melapisi bahan secara merata di atasnya.
Bahan apusan mencakup-organisme bersel tunggal, alga kecil, darah, media kultur bakteri, jaringan lepas hewan dan tumbuhan, testis, kepala sari, dll.
Saat mengolesi, perhatian harus diberikan pada:
(1) Kaca objek harus dibersihkan.
(2) Kaca objek harus rata.
(3) Lapisannya harus seragam. Oleskan tetesan tersebut ke kanan tengah kaca objek dan sebarkan secara merata dengan pisau bedah atau tusuk gigi.
(4) Lapisannya harus tipis. Dengan menggunakan kaca objek lain sebagai slide, dorong perlahan dari kanan ke kiri di sepanjang permukaan kaca objek yang diberi cairan (sudut antara kedua slide harus 30 derajat hingga 45 derajat), dan aplikasikan lapisan tipis yang seragam.
(5) Tetap. Jika fiksasi diperlukan, bahan fiksatif kimia atau metode pengeringan (bakteri) dapat digunakan untuk fiksasi.
(6) Pewarnaan. Bakteri menggunakan metilen biru, dan darah menggunakan larutan pewarnaan Wright. Larutan pewarna harus menutupi seluruh permukaan lapisan.
(7) Bilas. Gunakan kertas penyerap untuk menyerap atau mengeringkan.
(8) Tutup filmnya. Pelestarian jangka panjang menggunakan film pohon Kanada.
2. Metode pengepresan tablet
Metode kompresi adalah suatu metode pengirisan bahan biologis dengan cara meletakkannya di antara kaca objek dan penutup, memberikan tekanan tertentu untuk membubarkan sel-sel jaringan.
Proses umum metode pengepresan tablet:
(1) Pemilihan bahan. Untuk mengamati pembelahan sel, sel jaringan segar dengan pembelahan sel yang kuat harus dipilih sebagai bahan. Seperti ujung akar, meristem ujung batang, sel sumsum tulang, kepala sari (sel induk serbuk sari). Sarang sperma (spermatosit), dll.
(2) Tetap. Fiksasi material dapat ditentukan sesuai kebutuhan, dan sampel harus segera dikompresi dan diamati. Tidak perlu melakukan perawatan fiksasi terpisah (sinkron dengan pewarnaan); Jika bahan tidak diperiksa segera setelah pengambilan sampel, bahan tersebut dapat difiksasi dengan fiksatif (biasanya fiksatif asam asetat alkohol). Setelah difiksasi selama 2-24 jam (tergantung bahannya), bilas dengan etanol 95% dan simpan dalam etanol 70% untuk digunakan nanti.
(3) Pemisahan. Bahan yang tidak mudah didispersikan oleh sel sebaiknya diberi perlakuan dengan larutan pemisah hidrolisis (seperti HCl 1N atau semen asam klorida) selama 6-20 menit. Setelah disosiasi, mereka harus dibilas dengan air sebelum diwarnai.
(4) Pewarnaan. Ada banyak jenis pewarna. Kromosom biasanya diwarnai dengan larutan pewarna magenta asam asetat.
(5) Tekan tabletnya. Letakkan bahan pada kaca objek, tambahkan setetes air atau larutan pewarna, tutup kaca objek dengan penutup, dan tekan perlahan dengan ibu jari.
(6) Amati. Setelah dikompresi, dapat diamati di bawah mikroskop.
